همکاری با انجمن علمی گیاهان دارویی ایران

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان

1 کارشناس ارشد، گروه زراعت و علوم دامی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج

2 استاد، گروه زراعت و علوم دامی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج

3 دانشیار، گروه زراعت و علوم دامی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج

4 استادیار، مرکز تحقیقات کشاورزی و منابع طبیعی استان اصفهان

چکیده

به منظور بررسی تأثیر تیمارهای هورمونی بر کالزایی و باززایی در گیاه رازیانه، پنج ریزنمونه (برگ، هیپوکوتیل، مریستم انتهایی، ریشه و طوقه) انتخاب شد. بذر گیاه رازیانه بعد از استریل به محیط آب در لوله آزمایش روی پل کاغذی کشت و در دمایoC24 با 16 ساعت روشنایی و 8 ساعت تاریکی قرار داده شد و بعد از گذشت 15 روز که گیاه به ارتفاع حدود 10 سانتی‌متر رسید ریزنمونه‌ها تهیه شدند. القای کالوس با کشت ریزنمونه‌ها روی محیط  MS½ با 9 تیمار هورمونی شامل هورمون 2,4-D (2، 4 و 8 میلی‌گرم در لیتر) و BAP (25/0، 5/0 و 1 میلی‌گرم در لیتر) تحت شرایط 16 ساعت روشنایی و 8 ساعت تاریکی و دمای oC24 انجام شد. اندازه کالوس، وزن کالوس و درصد کالزایی در هر یک از تیمارهای بکار رفته اندازه‌گیری شد. با درنظر گرفتن صفات فوق هورمونی 2 و 4 میلی‌گرم در لیتر 2,4-D و 25/0 و 5/0 میلی‌گرم در لیتر BAP بهترین ترکیبهای هورمونی و نیز هیپوکوتیل و مریستم انتهایی بهترین ریزنمونه‌ها شناخته شدند. در مرحله باززایی کالوس محیط  MS½ با 9 ترکیب هورمونی یاد شده به همراه 2,4-D (2/0 میلی‌گرم در لیتر) و BAP (5/0، 2، 4، 15، 20 و 25 میلی‌گرم در لیتر) و TDZ (15 و 20 میکرولیتر) و محیط  MS½ بدون هورمون در نظر گرفته شد که محیط MS ½ بدون هورمون بهترین محیط باززایی را نشان داد. به منظور مطالعه تولید اسانس در فاز کشت سوسپانسیون سلولی بهترین تیمار در فاز کالزایی انتخاب شد و کالوس به محیط سوسپانسیون سلولی به محیط کشت MS ½ شامل 2,4-D (2 میلی‌گرم در لیتر) و BAP (25/0 میلی‌گرم در لیتر) منتقل و در شرایط تاریکی در دمای oC24 روی شیکر با 100 دور در دقیقه قرار داده شدند. بعد از 4 هفته طیف‌نگاری جرمی انجام شد که تولید موادی همچون آلفا-پینن و لیمونن در محیط کشت بافت گزارش شد.

کلیدواژه‌ها

- Anzidei, M., Vivona, L., Schiff, S. and Bennici, A., 1996. In vitro culture of Foeniculum vulgare: Callus characteristics in relation to morphogenesis. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 45: 263-268.
- Anzidie, M., Bennici, A., Schiff, S., Tan, C. and Mori, B., 2000. Organogenesis and somatic embryogenesis in Foeniculum vulgare: histological observation of developing embryogenesis callus. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 61: 69-79.
- Bennici, A., Anzidei, M. and Vendramin, G., 2004. Genetic stability and uniformity of Foeniculum vulgare Mill. Regeneration of plants through organogenesis and somatic embryogenesis. Plant Science, 166: 221-227.
- Hanault, G. and Mattar, A., 1995. Enhancement of somatic embryogenesis frequency by gibberellic acid in fennel. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 41: 171-176.
 -Hanault, G. and Manoir, J., 1992. Micro propagation of fennel (Foeniculum vulgare Mill.). Biotechnology in Agriculture and Forestry, 19: 199-217.
- Lawless, J., 1992. The Encyclopedia of Essential oils , Element Books Lt, Shaftesbur ,United Of Kigdom, 256 pages.
-  Stahl, E., Dumont, E. and Jork, H., 1975. Analyze chromatograhique et Microscopique des drogues. Technique et Documentation, pp: 148-149.
- Theiler Hedtrich, R. and Kagi, A.C., 1991. Cloning in vitro & somatic embryogenesis in Foeniculum vulgare Mill. (fennel) of 'Zeta fino' and 'Zefa tard'. Acta Horticulture, 300: 287-291.