اثر نوع ریزنمونه‌ بر مقدار ماده مؤثره تولید شده در شرایط In vitro در دو گونه Betula pendula Roth و Betula litwinowii

نوع مقاله: مقاله پژوهشی


1 دانشیار، دانشکده علوم جنگل، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران

2 دانشجوی دکترا، دانشکده علوم جنگل، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران

3 دانش‌آموخته دکترا، مرکز تحقیقات کارآزمایی بالینی طب سنتی، دانشگاه شاهد، تهران، ایران


شناسه دیجیتال (DOR):

بتولین و اسید بتولینیک یکی از مهمترین متابولیت‌های ضد سرطان (پوست، سینه، رحم، روده، پانکراس، مغز استخوان و غیره) و ضد ایدز می‌باشند که منبع اولیه تهیه آن درخت توس است. با توجه به در حال انقراض بودن این درختان در ایران، جایگزین نمودن روش‌های نوین کشت سلول و بافت بجای استخراج از پوست امری ضروری می‌باشد. هدف از انجام این مطالعه تعیین میزان تأثیر نوع ریزنمونه بر مقدار بتولین و بتولینیک اسید تولید شده در کالوس‌های دو گونه Betula pendula و B. litwinowii در مقایسه با نمونه‌های گرفته شده از طبیعت بوده است. ریزنمونه برگ و پوست گونه‌های مذکور با هدف کالزایی در محیط کشت پایه WPM حاوی 1 میلی‌گرم بر لیتر BAP و 0.1 میلی‌گرم بر لیتر 2,4-D کشت شدند. میزان بتولین و اسید بتولینیک کالوس‌های سه ماهه با استفاده از تکنیک HPLC ارزیابی و با میزان موجود در ساقه‌های یک سانتی‌متری دو گونه (نمونه‌های گرفته شده از طبیعت) مقایسه شد. ریزنمونه پوست به‌مراتب موفق‌تر از ریزنمونه برگ در کالزایی عمل نمود و در عین حال میزان ماده مؤثره بیشتری نیز در آن القاء شد. میزان بتولین و اسید بتولینیک استخراجی از عصاره پوست طبیعی B. pendula به‌ترتیب 5.227 و 2.909 درصد و B. litwinowii به‌ترتیب 649/5 و 519/2 درصد بود. همچنین کالوس‌های حاصل از پوست B. pendula و B. litwinowi به‌ترتیب دارای 0.0226 و 0.016 درصد بتولین و 0.0525 و 0.057 درصد اسید بتولینیک بودند. به‌طور کلی ریزنمونه پوست در هر دو گونه توس، باعث القاء مقدار بیشتری ماده مؤثره نسبت به ریزنمونه برگی در شرایط In vitro شد.


- Abyshev, A.Z., Agaev, E.M. and Guseinov, A.B., 2007. Studies of the chemical composition of birch bark extract (Cortex betula) from the Betulaceae family. Pharmaceutical Chemistry Journal, 41: 942-949.

- Aguirre, M.C., Delporteand, C. and Backhouse, N., 2006. Topical anti-inflammatory activity of 2 alpha-hydroxy pentacyclic triterpene acids from the leaves of Ugni molinae. Medicinal Chemistry, 14(16): 5673-5677.

- Demirci, B., Paper, D.H., Demirci, F., Hüsnü Can Baser, K. and Franz, G., 2004. Essential oil of Betula pendula Roth buds. Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine, 1(3): 301-303.

- Falamas, A., Cınta, S. and Pınzaru, C.A., 2011. Betulin and its natural resource as potential anticancer drug candidate seen by FT-raman and FT-IR spectroscopy. Journal of Raman Spectroscopy, 42(1): 97-107.

- Fan, G., Zhai, Q., Li, X. and Zhan, Y., 2013. Compound of Betula platyphylla cell suspension cultures in response to fungal elicitor. Biotechnology & Biotechnological Equipment, 27(1): 3569-3572.

- Fan, G.Z., Li, X.C., Wang, X.D. and Zhan, Y.G., 2010. Chitosan activates defense responses and triterpenoid production in cell suspension cultures of Betula platyphylla Suk. African Journal of Biotechnology, 9(19): 2816-2820.

- Fletcher, E.K.A., Amoako, T.N.E. and Peter Twumasi, P., 2011. Effect of 2,4-D, explants type and cultivar on the callogenesis expression of cassava (Manihot esculenta Crantz) in Ghana. African Journal of Biotechnology, 10(46): 9396-9401.

- Gastaldo, P., Caviglia, M,A., Carli, S. and Profumo, P., 1996. Somatic embryogenesis and esculin formation in calli and embryoids from bark explants of Aesculus hippocastanum L. Plant Sciences, 119: 157-162.

- Haroon, A., 2011. Propagation of pecan(Carya Illinoensis)using in vitro techniques. Ph.D thesis, University of the Punjab, Lahore.

- Holonce, L., Ranga, F., Crainic, D., Truta, A. and Socaciu, C., 2012. Evaluation of betulin and betulinic acid content in birch bark from different forestry areas of western carpathians. Notulae Botanicae Horti Agrobotanici Cluj-Napoca, 40(2): 99-105.

- Huang, L., Lee, K.H. and Chen, C.H., 2006. Synthesis and anti-HIV activity of Bi-functional BA derivatives. Bioorganic and Medicinal Chemistry, 14(7): 2279-2289.

- Jafari Hajati, R., Payamnoor, V., Ghasemi Bezdi, K. and Ahmadian Chashmi, N., 2016a. Production of pharmaceutical active ingredients via hairy root induction of Birch (Betula pendula). Iranian Journal of Rangelands and Forests Plant Breeding and Genetic Research, 24(2): 165-176.

- Jafari hajati, R., Payamnoor, V., Ghasemi Bezdi, K. and Ahmadian Chashmi, N., 2016b. Optimization of callus induction and cell suspension culture of Betula pendula Roth for improved production of betulin, betulinic acid, and antioxidant activity. In Vitro Cellular and developmental Biology-Plant 52(4), 400-407.

- Jäger, S., Trojan, H., Kopp, T., Laszczyk, M.N. and Scheffler, A., 2009. Pentacyclic triterpene distribution in various plants-rich sources for a new group of multi-potent plant extracts. Molecules, 14: 2016-2031.

- Kim, D., Chen, Z.D., Nguyen, V.T., Pezzuto, J.M., Qiu, S.X. and Lu, Z.Z., 1997. A concise semi-synthetic approach to betulinic acid from betulin. Synthetic Communications, 27: 1607-1612.

- Kordalivand, A., 2012. Genetic diversity of Birch based on morphology of leaf and fruit. Thesis submitted in partial fulfillment of a degree of M.Sc. in silviculture and forest ecology, Gorgan University of agricultural sciences and natural resources, 137p.

- Laitinen, M.L., Julkunen-Tiitto, R., Yamaji, K., Heinonen, J. and Rousi, M., 2004. Variation in birch bark secondary chemistry between and within clones: implications for herbivory by hares. OIKOS, 104(2): 316-326.

- Liu, J., Fu, M.L. and Chen, Q.H., 2011. Biotransformation optimization of betulin into betulinic acid production catalysed by cultured Armillaria luteo-virens Sacc ZJUQH100-6 cells. Journal of Applied Microbiology, 110: 90-97.

- Pai, S.R. and Joshi, R.K., 2014. Distribution of betulinic acid in plant kingdom. Plant Science Today, 1(3): 103-107.

- Pisha, E., Chai, H., Lee, I.S., Chagwedera, T.E., Farnsworth, N.R., Cordell, A.C., Beecher, C.W.W., Fong, H.H.S., Kinghorn, A.D., Brown, D.M., Wani, M.C., Wall, M.E., Hieken, T.J., Das Gupta, T.K. and Pezzuto, J.M., 1995. Discovery of betulinic acid as a selective inhibitor of human melanoma that functions by induction of apoptosis. Nature Medicine, 1: 1046-1051.

- Qi-he, Ch., Ming-liang, F., Jin, L., Hai-feng, Z., Guo-Qing, H. and Hui, R., 2009. Optimizations of ultrasonic-assisted extraction (UAE) of betulin from white birch bark using response surface methodology. Ultrasonics Sonochemistry, 16:

- Raal, A., Kanut, M. and Orav, A., 2010. Annual variation of yield and composition of the essential oil of common juniper (Juniperus communis L.) braches from Estonia. Baltic Forestry, 16: 50-56.

- Smith, P.F., Oundele, A., Forrest, A., Wilton, J., Salzwedel, K., Doto, J., Allaway, G.P. and Martin, D.E., 2007. Phase I and II study of the safety, virologic effect, and pharmacokinetics/pharmacodynamics of single-dose 3-O-(3′,3′-dimethylsuccinyl) betulinic acid (bevirimat) against human immunodeficiency virus infection. Antimicrobial Agents and Chemotherapy, 51: 3574-3581.

- Yin, J., Ma, H., Gong, Y., Xiao, J., Jiang, L., Zhan, Y., Li. C., Ren, C. and Yang, Y., 2013. Effect of MeJA and light on the accumulation of betulin and oleanolic acid in the saplings of white birch (Betula platyphylla Suk). American Journal of Plant Sciences, 4: 7-15.

- Zaki, M., Sofi, M.S. and Kaloo, Z.A., 2011. A reproducible protocol for raising clonal plants from leaf segments excised from mature trees of Betula utilis a threatened tree species of Kashmir Himalayas. International Multidisciplinary Research Journal, 1(5): 7-13.

- Zeping, C., Xiao, J., Xianghong, T., Jinglong, J., Fang, L. and Wang, X., 2015. Direct and indirect in vitro plant regeneration and the effect of brassinolide on callus differentiation of Populus euphratica Oliv. South African Journal of Botany, 97: 143-148.