همکاری با انجمن علمی گیاهان دارویی ایران

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان

1 عضو هیئت علمی موسسه تحقیقات جنگلها و مراتع کشور

2 بخش تحقیقات گیاهان دارویی و محصولات فرعی، موسسه تحقیقات جنگل‌ها و مراتع کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران

10.22092/ijmapr.2026.369344.3541

چکیده

سابقه و هدف: با توجه به ارزش اقتصادی بسیاری از گونه‌های گیاهان دارویی در ایران و نیاز صنایع وابسته، شناسایی و معرفی اکسشن‌های برتر به تولیدکنندگان گیاهان دارویی، می‌تواند ضمن افزایش کمیت و کیفیت گیاهان تولید شده، ارزش اقتصادی آنها را بالا ببرد و به توسعه صنعت گیاهان دارویی کمک نماید. این تحقیق در راستای تحقیقات تکمیلی معرفی ارقام منتخب گیاهان دارویی به منظور تولید بذر برای توسعه سطح زیر کشت انجام شد. هدف از این مطالعه، تعیین اکسشن برتر گل‌راعی (L. Hypericum perforatum) از لحاظ صفات زراعی و فیتوشیمیایی، با استفاده از چهار اکسشن برگزیده مرحله مقدماتی، A01 (کد بانک ژن 10601) از منشأ اردبیل، A02 (کد بانک ژن 33255) از منشاء قزوین، A03 (کد بانک ژن 33258 از منشاء قزوین) و A04 (کد بانک ژن 23335) از منشاء خلخال می‌باشد.
مواد و روش‌ها: بذر اکسشن‌های برتر گل‌راعی حاصل از مطالعات مرحله مقدماتی، در ایستگاه تحقیقات البرز در زمستان سال 1400 تولید نشاء شدند، و در بهار  سال 1401 در قالب طرح بلوک‌های کامل تصادفی با 5 تکرار در مزرعه کشت گردیدند. در سال 1402 در مرحله گلدهی و رسیدگی بذر، اطلاعات لازم ثبت شد. اطلاعات مورفولوژیک، عملکرد سرشاخه گلدار و عملکرد بذر در هکتار اندازه‌گیری شد. سرشاخه‌ گیاهان در مرحله گلدهی کامل به منظور اندازه‌گیری صفات فیزیولوژیک برداشت شدند. اندام‌های مختلف گل، برگ، ساقه و سرشاخه گلدار گیاه به­صورت جداگانه با استفاده از متانول 80% (3 =pH) تحت امواج فراصوت دستگاه اولتراسونیک در دمای 50 درجه سانتی‌گراد عصاره‌گیری و میزان هایپریسین در عصاره‌ها با استفاده از آنالیز کروماتوگرافی مایع با کارایی بالا (HPLC) اندازه‌گیری شد. علاوه بر این، محتوای تام فنل، فلاونوئید و آنتوسیانین و فعالیت آنتی‌اکسیدانی عصاره هیدروالکلی (اتانول 80%) سرشاخه گلدار از اکسشن‌ها ارزیابی گردید.
نتایج: تجزیه‌وتحلیل آماری نتایج نشان داد که بین اکسشن‌های مختلف گل‌راعی در کلیه صفات مورفولوژیک، وزن تک بوته‌، عملکرد سرشاخه گلدار، عملکرد بذر و میزان فنل، آنتوسیانین و هایپریسین در سطح احتمال 1 درصد و در صفات محتوای فلاونوئید و فعالیت آنتی‌اکسیدانی در سطح احتمال 5 درصد اختلاف آماری وجود دارد. مقایسه میانگین‌ صفات با آزمون LSD نشان داد که اکسشن A02 از قزوین دارای بیشترین ارتفاع گیاه (65.8 سانتیمتر)، دور تاج‌پوشش (222 سانتیمتر)، وزن تک بوته گلدار (134.8 گرم)، عملکرد سرشاخه‌گلدار (5392 کیلوگرم در هکتار)، وزن بذر تک بوته 12.3 گرم) و عملکرد بذر (492 کیلوگرم در هکتار) است. بیشترین فنل برابر با 6240.8 میکروگرم گالیک اسید بر گرم ماده خشک، در اکسشن A04 از خلخال به‌دست آمد. این در حالی است که بیشترین فلاونوئید، آنتوسیانین و فعالیت آنتی‌اکسیدانی به‌ترتیب برابر با810.7 میکروگرم کوئرستین بر گرم ماده خشک، 2.2 میکروگرم سیانیدین بر گرم گیاه تر و 58.9 درصد در اکسشن A03 از قزوین اندازه‌گیری شد. مقایسه میانگین هایپریسین در اندام‌های مختلف چهار اکسشن نشان داد که میزان هایپریسین در گل برابر با 3.84 میلی‌گرم بر گرم ماده خشک و بیشتر از سایر اندام‌ها بود، بعد از آن برگ (2.25 میلی‌گرم بر گرم) و بعد سرشاخه گلدار (1.49 میلی‌گرم بر گرم) حاوی هایپریسین بالاتر بودند. کمترین مقدار هایپریسین با 0.68 میلی‌گرم بر گرم در ساقه مشاهده شد. نتایج همبستگی ساده صفات نشان داد که بین عملکرد سرشاخه با وزن تک ‎بوته‌ و ارتفاع گیاه در سطح احتمال 1 درصد و دور تاج‌پوشش در سطح احتمال 5 درصد همبستگی مثبت معنی‌دار وجود داشت. همچنین بین فعالیت آنتی‌اکسیدانت با میزان هایپریسین همبستگی مثبت معنی‌دار در سطح احتمال 1 درصد مشاهده شد.
نتیجه‌گیری: نتایج نشان داد که اکسشن A02 از قزوین در صفات مورفولوژیک و عملکرد سرشاخه‌ گلدار و بذر، برتر بود. به لحاظ صفت آنتی‌اکسیدانی، اکسشن A03 از قزوین بیشترین فعالیت را نشان داد. همچنین بیشترین مقدار هایپریسین سرشاخه‌ گلدار در اکسشن A01 از اردبیل مشاهده شد. بنابراین اکسشن A02، برای معرفی رقم برگزیده شد و بنظر می‌رسد انتخاب اکسشن‌های A01 و A02 برای تحقیقات تکمیلی به­منظور دستیابی به رقمی با کمیت و کیفیت بالا مناسب خواهد بود.
 

کلیدواژه‌ها

موضوعات

- Alali, F., Tawaha, K. and Al-Eleimat, T., 2004. Determination of hypericin content in Hypericum triquetrifolium Turra (Hypericaceae) growing wild in Jordan. Natural Product Research, 18: 147-151. https://doi.org/10.1080/14786410310001608046
- Alahmad, A., Alghoraibi, I., Zein, R., Kraft, S., Dräger, G., Walter, J.G. and Scheper, T., 2022. Identification of major constituents of Hypericum perforatum L. extracts in Syria by development of a rapid, simple, and reproducible HPLC-ESI-Q-TOF MS analysis and their antioxidant activities. ACS Omega, 7: 13475-13493. https://doi.org/10.1021/acsomega.1c06335
- Azadi, R., 1999. Flora of Iran. Guttiferae, Research institute of forests and rangelands press, 62p. https://www.gisoom.com/book/1289507/
- Baharfar, R., Azimi, R. and Mohseni, M., 2015. Antioxidant and antibacterial activity of flavonoid- polyphenol- and anthocyanin-rich extracts from Thymus kotschyanus Boiss & Hohen aerial parts. Journal of Food Science and Technology, 52(10): 6777-6783. https://doi.org/10.1007/s13197-015-1752-0
- Blois, M.S., 1985. Antioxidant determinations by the use of a stable free radical. Nature, 181: 1199-1200. https://doi.org/10.1038/1811199a0
- Briskin, D.P. and Gawienowski, M.C., 2001. Differential effects of light and nitrogen on production of hypericins and leaf glands in Hypericum perforatum. Plant Physiology and Biochemistry, 39: 1075-1081. https://doi.org/10.1016/S0981-9428(01)01326-2
- Chen, H., Muhammad, I., Zhang, Y., Ren, Y., Zhang, R., Huang, X., Diao, L., Liu, H., Li, X., Sun, X., Abbas, G. and Li, G., 2019. Antiviral activity against infectious bronchitis virus and bioactive components of Hypericum perforatum L. Frontiers in Pharmacology, 10(1272): 1-22. https://doi.org/10.3389/fphar.2019.01272
- Choudhary, N., Collignon, T.E., Tewari, D. and Bishayee, A., 2022. Hypericin and its anticancer effects: From mechanism of action to potential therapeutic application. Phytomedicine, 105: 154356. https://doi.org/10.1016/j.phymed.2022.154356
- Cirak, C., Radusiene, J., Jakstas, V., Ivanauskas, L., Yayla, F., Seyis, F. and Camas, N., 2016. Secondary metabolites of Hypericum species from the Drosanthe and Olympia sections. South African Journal of Botany, 104: 82-90. https://doi.org/ 10.1016/j.sajb.2015.09.022
- Crockett, S.L., Wenzig, E.M., Kunert, O. and Bauer, R., 2008. Anti-inflammatory phloroglucinol
derivatives from Hypericum empetrifolium. Phytochemistry Letters, 1(1): 37-43. https://doi.org/10.1016/j.phytol.2007.12.003
- Ebadi, A., Morshedloo, M.R., Fatahi Moghaddam, M.R. and Yazdani, D., 2011. Evaluation of some population of Hypericum perforatum L. using agro-morphological traits and most components of essential oil. Plant Production Technology, 3(1): 1-14. https://ppt.basu.ac.ir/article_243_en.html
- Eggelkraut-Gottanka, S.V., Abu-Abed, S., Muller, W. and Schmidt, P., 2002. Quantitative analysis of the active components and the by-products of eight dry extracts of Hypericum perforatum L. (St John’s wort). Phytochemical Analysis, 13: 170-176. https://doi.org/10.1002/pca.638
- Ernst, E., 2003. Hypericum; The Genus Hypericum. Taylor & Francis, Inc., London. https://doi.org/10.1201/9780367800963
- Jaimand, K., Rezaee, M.B., Behrad, Z., Mirza, M., Mozaffarian, V., Azady, R., Naderi, M., Golipur, M., Bahmanzadegan, A., Meshkizadeh, S. and Karimi, Sh., 2014. Determination of hypericine content in nine species of Hypericum. Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants Research, 30(1): 10-18. https://doi.org/10.22092/ijmapr.2014.5261
- Karagül, S., Ozel, D., Ozturk, I. and Yurt, F., 2024. An in vitro evaluation of Hypericum perforatum loaded-chitosan nanoparticle/agarose film as a wound dressing. Journal of Drug Delivery Science and Technology, 98: 105873. https://doi.org/10.1016/j.jddst.2024.105873
- Lazzara, S., Carrubba, A. and Napoli, E., 2015. Hypericum spp.: A resource from wild mediterranean flora for the treatment of mild depression: 337-354. In: Gupta, V.K., (Ed.). Bioactive Phytochemicals: Perspectives for Modern Medicine. Daya  Publishing House, New Delhi, 435p. https://hdl.handle.net/10447/181068
- Lebaschi, M.H. and Sharifi, E., 2002. Fluctuation of hypericin in natural habitates of Hypericum perforatum. Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants Research, 11(1): 87-101. https://ijmapr.areeo.ac.ir/article_118365.html?lang=en
- Mir, M.Y., Hamid, S., Kamili, A.N. and Hassan, Q.P., 2019. Sneak peek of Hypericum perforatum L.: Phytochemistry, phytochemical efficacy and biotechnological interventions. Journal of Plant Biochemistry and Biotechnology, 28: 357-373. https://doi.org/10.1007/s13562-019-00490-7
- Montoya, A., Daza, A., Munoz, D., Rios, K., Taylor, V., Cedeno D., Velez, I.D., Echeverri, F. and Robledo, S.M. 2015. Development of a novel formulation with hypericin to treat cutaneous leishmaniasis based on photodynamic therapy in vitro and in vivo studies. Antimicrob Agents Chemother, 59(9): 5804-5813. https://doi.org/10.1128/AAC.00545-15
- Nobakht, S.Z., Akaberi, M., Mohammadpour, A.H., Tafazoli Moghadam, A. and Emami, S.A., 2022. Hypericum perforatum: Traditional uses, clinical trials, and drug interactions. Iranian Journal of Basic Medical Sciences, 26(9): 1045-1058. https://doi.org/10.22038/IJBMS.2022.65112.14338
- Oliveira, A.I., Pinho, C., Sarmento, B. and Dias, A.C., 2016. Neuroprotective activity of Hypericum perforatum and its major components. Frontiers in Plant Science, 7:(1004): 1-16. https://doi.org/10.3389/fpls.2016.01004
- Greeson, J.M., Sanford, B. and Monti, D.A., 2001. St. John’s wort (Hypericum perforatum): A review of the current pharmacological, toxicological, and clinical literature. Psychopharmacology, 153: 402-414. https://doi.org/10.1007/s002130000625
- Saddiqe, Z., Naeem, I. and Maimoona, A., 2010. A review of the antibacterial activity of Hypericum perforatum L. Journal of Ethnopharmacology, 131(3): 511-521. https://doi.org/10.1016/j.jep.2010.07.034
- Sayyadi, A., Ahmadi, J., Asghari, B. and Hosseini, SM., 2014. Effect of drought stress and salinity on phenolic ompounds of Thymus vulgaris L. Eco-phytochemical Journal of Medicinal Plants, 2(4): 50-61. https://doi.org/10.1016/j.indcrop.2019.04.055
- Seyed Hajizadeh, H., Ebadi, B., Morshedloo, M.R. and Abdi Ghazijahani, A., 2021. Morphological and phytochemical diversity among some Iranian  Rosa damascena Mill. Landraces. Journal of Ornamental Plants, 11(4): 243-255. https://sanad.iau.ir/fa/Article/1033142?FullText=FullText
- Seyrekoglu, F., Temiz, H., Eser, F. and Yildirim, C., 2022. Comparison of the antioxidant activities and major constituents of three Hypericum species (H. perforatum, H. scabrum and H. origanifolium) from Turkey. South African Journal of Botany, 146: 723-727. https://doi.org/10.1016/j.sajb.2021.12.012
- Singleton, V.L., Orthofer R. and Lamuela-Raventós, R.M., 1999. Analysis of total phenols and other oxidation substrates and antioxidants by means of folin-ciocalteu reagent. Methods in Enzymology, 299: 152-178. https://doi.org/10.1016/S0076-6879(99)99017-1
- Suntar, I.P., Akkol, E.K., Yılmazer, D., Baykal, T., Kırmızıbekmez, H., Alper, M. and Yesilad, E., 2010. Investigations on the in vivo wound healing potential of Hypericum perforatum L. Journal of Ethnopharmacology, 127(2): 468-477. https://doi.org/10.1016/j.jep.2009.10.011
- Sytar, O., Svediene, J., Loziene, K., Paskevicius, A., Kosyan, A. and Taran, N., 2016. Antifungal properties of hypericin, hypericin tetrasulphonic acid and fagopyrin on pathogenic fungi and spoilage yeasts. Pharmaceutical Biology, 54(12): 3121-3125. https://doi.org/10.1080/13880209.2016.1211716
- Tabaei Aghdaei, S.R., Golab Ghadaksaz, R. and Jafari, A.A., 2010. Correlation between flower yield and different characters in Rosa damascena Mill. Iranian Journal of Horticultural Science and Tchnology, 11(1): 61-70. https://www.sid.ir/paper/80936/en
- Tahmasebi-Boldaji, R., Hatamipour, M.-S., Khanahmadi, M., Sadeh, P. and Najafipour, I., 2019. Ultrasound-assisted packed-bed extraction of hypericin from Hypericum perforatum L. and optimization by response surface methodology. Ultrasonics Sonochemistry, 57: 89-97. https://doi.org/10.1016/j.ultsonch.2019.05.018
- Tavakoli, A., 2013. Medicinal Plants. Nazari press, 272p. https://www.gisoom.com/book/1983202/
- Tawaha, K., Gharaibeh, M., El-Elimat, T. and Alali, F.Q., 2010. Determination of hypericin and hyperforin content in selected Jordanian Hypericum species. Industrial Crops and Products, 32: 241-245. https://doi.org/10.1016/j.indcrop.2010.04.017
- Wagner, G.J., 1979. Content and vacuole/extra vacuole distribution of neutral sugars, free amino acids and anthocyanin in protoplasts. Plant Physiology, 64(1): 88-93. https://doi.org/10.1104/pp.64.1.88
- Wu, J.-J., Zhang, J., Xia, C.-Y., Ding, K., Li, X.-X., Pan, X.-G., Xu, J.-K., He, J. and Zhang, W.-K., 2023. Hypericin: A natural anthraquinone as promising therapeutic agent. Phytomedicine, 111: 154654. https://doi.org/10.1016/j.phymed.2023.154654
- Yoosefi, B., Tabaie-Aghdaie, S.R. and Amiri, A., 2021. Study on yield and flower yield components, essential oil percentage, and some morphological and phenological traits in 48 different accessions of damask rose (Rosa damascena Mill.) in Kermanshah Province. Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants Research, 37(4): 612-627. https://doi.org/10.22092/ijmapr.2021.353968.2964
- Zirak, N., Shafiee, M., Soltani, G., Mirzaei, M. and Sahebkar, A., 2019. Hypericum perforatum in the treatment of psychiatric and neurodegenerative disorders: Current evidence and potential mechanisms of action. Journal of Cellular Physiology, 234(6): 8496-8508. https://doi.org/10.1002/jcp.27781
- Zhao, X., Zhang, H., Wu, Y. and Yu, C., 2023. The efficacy and safety of St. John’s wort extract in depression therapy compared to SSRIs in adults: A meta-analysis of randomized clinical trials. Advances in Clinical and Experimental Medicine, 32(2): 151-161. https://doi.org/ 10.17219/acem/152942