همکاری با انجمن علمی گیاهان دارویی ایران

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان

1 گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه شهید بهشتی

2 پژوهشکده گیاهان دارویی، دانشگاه شهید بهشتی

چکیده

هدف این تحقیق بررسی میزان تولید پارتنولید و فعالیت آنتی اکسیدان در کشت کالوس و گیاهچه های ریزازدیادی شده گیاه Tanacetum parthenium (L.) Sch. Bip. تیره Asteracae تحت اثر تیمارهای زخمی کردن (wounding) و دو فیتوهورمون استرس آبسیزیک اسید و سالیسیلیک اسید بود. به این منظور بذر گیاه در محیط MS/4  با کل ویتامین ها کشت شده و قطعات ساقه ای گیاهچه های حاصل روی محیط MS با هورمونهای µM 0.54) NAA) و µM 4.44) BAP) کشت داده شد. تیمارهای زخمی کردن، آبسیزیک اسید و سالیسیلیک اسید روی قطعات جدا کشت(جوانه انتهایی با گره اول) حاصل از گیاهچه های 2 ماهه ریزازدیادی شده به مدت 10 ساعت در محیط مایع انجام شد. تحلیل مقدار پارتنولید در عصاره گیاهچه ها توسط HPLC انجام شد. فعالیت آنتی اکسیدان به صورت فعالیت کیفی پراکسیداز و توسط الکتروفورز ژل پلی آکریل آمید ارزیابی شد. کالوس از قطعات برگی گیاهچه های حاصل از بذر در محیط MS با 2mg.l-1) NAA) و BAP  (0.5mg.l-1) بدست آمد. کالوسهای یک ماهه به محیط MS مایع با تیمارهای آبسیزیک اسید، سالیسیلیک اسید و دی متیل سولفوکسید (DMSO) انتقال یافته و پس از یک هفته مقدار پارتنولید و فعالیت کیفی پراکسیداز در آنها طبق روش فوق اندازه گیری شد. میزان پارتنولید بدست آمده در گیاهچه های ریزازدیادی شده در این تحقیق برابر 0.00283 ± 0.00863 بود، در حالی‌که تیمار زخمی کردن با سالیسیلیک اسید کمترین مقدار پارتنولید و بیشترین میزان رشد را در گیاهچه ها ایجاد کرد. تولید پارتنولید در تیمارها با افزایش رشد کاهش یافت. مقدار پارتنولید در کالوس میان تیمارها اختلاف معنی دار نداشت و نسبت به گیاهچه کمتر بود. نتایج الکتروفورز یک باند اضافی درتیمار زخمی کردن نشان داد. باندهای آنیونی از کاتیونی قویتر بودند. ولی میان باندهای الکتروفورزی بافت کالوس هیچ تفاوتی مشاهده نشد. بین میزان تولید پارتنولید در بافتهای گیاهی با فعالیت کیفی پراکسیداز رابطه‌ای مستقیم مشاهده شد.

کلیدواژه‌ها

 - Aljancic, I., Vajs, V., Bulatovic, V., Menkovic,N. and Milosavljevic, S., 2001. Parthenolide from the aerial parts of Tanacetum parthenium. Biochemical Systematic and Ecology, 29: 655-657.
- Andrew, C.A. and Robert, F., 1997. Two distinct sources of elicited Reactive Oxygen Species in tobacco epidermal cells. Plant Cell, 9: 1559-1572.
- Brown, A. M. G., Lowe, K. C., Davey, M. R. and Power, J. B., 1996. Feverfew (Tanacetum parthenium): tissue culture and parthenolide synthesis. Plant Science 116: 223-232.
- Cheong, Y. H., Chang, H.-S., Gupta, R., Wang, X., Zhu, T. and Luan, Sh., 2002. Transcriptional Profiling Reveals Novel Interactions between Wounding, Pathogen, Abiotic stress and HormonalResponses in Arabidopsis. Plant Physiology, 129: 661-677.
- Dermarderosian, A., 2001. A Guid to Popular Natural Products. Facts & Comparisons. Wolters Kluwer Company. pp. 90-92.
- Fiebich, B. L., Lieb, K., Engels, S. and Heinrich, M., 2002. Inhibition of LPS-induced P42/44 MAPkinase activation and iNOS/NO synthesis by parthenolide in rat primary microglial cells, Journal of Neoroimmunology, 132: 18-24.
- Handro, W., Mello, C.M., Manzano, M. A. and Floh, E. I. S., 1997. Enhancement of stem elongation and flower bud regeneration by salicylic acid. R. Bras. Fisiol. Veg, 9: 139-142.
- Janda, T., Szalai, G., Tari, I. and Páldi, E., 1999. Hydroponic treatment with salicylic acid decreases the effects of chilling injury in maize (Zea mays L.) plants. Planta, 208: 175-180.
- Kang, G., Wang, Ch., Sun, G. and Wang, Zh., 2003. Salicylic acid changes activities of H2O2-metabolizing enzymes and increases the chilling tolerance of banana seedlings. Environmental and Experimental Botany 50: 9-15.
- Kemper, K. J., 1999. Feverfew (Tanacetumparthenium). WWW.mcp.edu/herbal/default.htm. and WWW.childrenshospital.org/holistic
- Korori, S.A., 1989. Gel Electrophoretische and spectraphotomet rishe unteruchungen zum ein slussder temperature jvs struktur and okapivitat der amylase and peroxidase isoenzyme verschicdener bsymarten. Ph.D. Thesis, University Sur Boden kalture Win.
- Kurina Sanz, M., Hernandez, X. E. and Tom, C. E., 2000. Enhancement of tessaric acid production in Tessaria absinthioides cell suspension cultures. Plant Cell Report, 19: 821-824.
- Lamb, C. and Dixon, R. A., 1997. The oxidative burst in plant disease resistance. Anna. Rev. Plant Physil. Plant Mol. Biol., 48: 251-275.
- Merkouropoulos, G., Barnett, D. C. and Shirsat, A. H., 1999. The Arabidopsis extensin gene is developmentally regulated, is induced by wounding, methyl jasmonate, abscisic acid, and codes for a protein with unusual motifs. Planta, 208: 212-219.
- Pruitt, P., 2003. Outline for a Comprehensive Theory of Plant Hormones. WWW.pruittfamily.com/paul/plants.
- Scheel, D. and Wasternack, C., 2002. Plant Signal Transduction. OxfordUniversity Press. 320p.
- Smallwood, M. F., Calvert, C. M. and Bowles, D. J., 1999. Plant Responses to Environmental Stress. BIOS Scientific Publishers, Oxford. 224p.
- Stojakowska, A. and Kisiel, W., 1997. Production of parthenolide in organ cultures of feverfew. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 47: 159-162.
- Taiz, L. and Zeiger, E., 2002. Plant Physiology. Sinauer., 690p.
- Walker, T. S., Bais, H. P. and Vivanco, J. M., 2002. Jasmonic acid-induced hypericin production in cell suspention cultures of Hypericum perforatum L. (st. John’s wort). Phytochemistry, 60: 289-293.
- Weber, H., 2002. Fatty acid derived signals in plants. TRENDS in Plant Science, 7: 217-224.