همکاری با انجمن علمی گیاهان دارویی ایران

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان

1 استادیار، گروه بیماری‌شناسی گیاهی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، واحد علوم و تحقیقات دانشگاه آزاد اسلامی

2 دانشجوی دکترای تخصصی میکروب‌شناسی، دانشکده علوم زیستی، دانشگاه علوم (USM)، جزیره پنانگ، مالزی

3 دانشیار، گروه بیماری‌شناسی گیاهی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، واحد علوم و تحقیقات دانشگاه آزاد اسلامی

چکیده

گزنه دو پایه (Urtica dioica L.)، دارای خاصیت درمانی در معالجه بیماریهای مزمن انسان می‌باشد. در این پژوهش اثر ضد ویروسی عصاره‌های آبی و الکلی گزنه در مهار ویروسهای بیماری‌زای ایجاد کننده موزائیک گل رُز در محیط کشت مورد بررسی قرار گرفت. تعداد 530 نمونه از گونه‌های مختلف رُز دارای علائم موزائیک و یا بدون علائم از مناطق محتلف تهران و حومه جمع‌آوری شد. نمونه‌ها توسط آزمونهای سرولوژیک الیزای مستقیم و غیرمستقیم برای عوامل ویروسی موزائیک آرابیس Arabis mosaic virus و لکه حلقوی نکروتیک درختان میوه هسته‌دار Prunus necrotic ringspot virus مورد بررسی قرار گرفتند. تعداد 20 قلمه از نمونه‌های رُز آلوده به هر دو ویروس به محیط کشت MS انتقال داده شدند. سه غلظت (0/5، 2 و 5 میلی‌گرم اسانس 0/1 میلی‌لیتر از محیط کشت) از عصاره‌های آبی و اتانولی تهیه شده از بافت خشک برگ و ریشه گیاه گزنه به محیط‌های کشت حاوی قلمه‌های آلوده اضافه شد. قلمه‌های تیمار شده 30 روز پس از تیمار از لحاظ غلظت آلودگیهای ویروسی مورد ارزیابی قرار گرفتند. نتایج این بررسی نشان داد که عصاره آبی گزنه در مقایسه با عصاره الکلی از توان بیشتری در مهار عوامل ویروسی موزائیک رُز برخوردار است. عصاره‌های آبی گزنه با غلظتهای 2 و 5 و الکلی (اتانول) با غلظتهای mg/ml5/0 و mg/ml2 موجب حذف به‌ترتیب 90% آلودگی ویروس ArMV و 42% آلودگی PNRSV از قلمه‌های رُز مورد بررسی شدند. نتایج این بررسی نشان می‌دهد عصاره‌های آبی و الکی گزنه دارای اثر منفی در تکثیر عوامل ویروسی ایجاد کننده موزائیک در رُز می‌باشند و این احتمال وجود دارد که بتوان جهت عاری‌سازی گونه‌های رُز از آلودگیهای ویروسی در محیط‌های کشت از آنها استفاده نمود.

کلیدواژه‌ها

- Agbafor, K.N. and Akubugwo, E.L., 2007. Hypocholesterolaemic effect of ethanolic extract of fresh leaves of Cymbopogon citratus (lemongrass). African Journal of Biotechnology, 6(5): 596-598.
- Alisi, C.S., Emejulu, A.A., Alisi, P.N.C., Nwaogu, L.A. and Onyema, O.O., 2008. Decreased cardiovascular risk and resistance to hyperlipemia-induced hepatic damage in rats by aqueous extract of Urtica dioica. African Journal of Biochemistry Research, 2(4): 102-106.
- Banttari, E.E. and Goodwin, P.H., 1985. Detection of Potato viruses S, X and Y by enzyme-linked immunosorbent assay on nitrocellulose membranes (Dot-ELISA). Plant Disease, 69(3): 202-205.
- Boulila, M., Marrakchi, M., 2001. Detection and Characterization of Stone fruit virus disease in Tunisia. Phytopathologia Mediterranea, 40(3): 125-136.
- Chrubasik, J.E., Roufogalis, B.D., Wagner, H. and Chrubasik, S., 2007. A comprehensive review on the stinging nettle effect and efficacy profiles. Phytomedicine, 14(7): 568-579.
- Clark, M.F. and Adams, A.N., 1977. Characterization of the microplate methods of enzyme linke dimmunosorbentassay (ELISA) for the detection of plant viruses. Journal of General Virology, 34(3): 475-483.
- Cowan, M.M., 1999. Plant products as antimicrobial agents. Clinical Microbiology Reviews, 12(4): 564-582.
- Epstein, A.H. and Hill, J.H., 1995. The biology of rose rosette disease: A mite-associated disease of uncertain aetiology. Journal of Phytopathology, 143(2): 353-360.
- Gulcin, I., Küfrevio, O.K., Oktay, M. and Buyukokuro, M.E., 2004. Antioxidant, antimicrobial, antiulcer and analgesic activities of nettle (Urtica dioica L.). Journal of Ethnopharmacology, 90(2-3): 205-215.
- Johnstone, G.R., Munro, D., Brown, G.S. and Skotland, C.B., 1995. Serological detection, occurrence and spread of ilarviruses in temperate fruit crops, hops and roses in Tasmania. Acta Horticulture, 386(5): 132-135.
- Lichius, J.J. and Muth, C., 1997. The inhibiting effect of Urtica dioica root extracts on experimentally induced prostatic hyperplasia in the mouse. Planta Medica, 63(4): 307-310.
- Matsingou, T.C., Kapsokefalou, M. and Safiloglou, A., 2001. Aqueous infusions of Mediterranean herbs exhibits antioxidant activity towards iron-promoted oxidation of phospholipids, linoleic acid and deoxyribose. Free Radical Research, 35(5): 593-605.
- Moeini, A.A. and Izadpanah, K., 2000. Seroloical identification of PNRSV and PPV in Dasht-e-Moghan. Proceeding of the 14th Iranian plant protection congress, Isfahan, 5-8 September: 338.
- Moury, B., Cardin, L., Onesto, J.P., Candresse, T. and Poupet, A., 2000a. Enzyme-Linked Immunosorbent Assay testing of shoots grown in vitro and the use of IC/RT-PCR Improved detection of Prunus necrotic ringspot virus. Phytopathology, 90(5): 522-529.
- Moury, B., Cardin, L., Onesto, J.P., Candresse, T. and Poupet, A., 2000b. Survey of Prunus necroticringspot virus in rose and its variability in rose and prunus. Plant Disease, 91(1): 84-91.
- Murashighe, T. and Skoog, F., 1962. A revised medium for rapid growth and bio-assays with tobacco tissue cultures. Plant physiology, 15(3): 473-497.
- Obertreis, B., Giller, K., Teucher, T., Behnke, B. and Schmitz, H., 1996. Anti-inflammatory effect of Urtica dioica folia extract in comparison to caffeic malic acid. Arzneimittel Forschung Drug Research, 46(1): 52-56.
- Rakhshandehroo, F., Pourrahim, R., Zamani Zadeh, H.R., Rezaee, S. and Mohammadi, M., 2005. Incidence and distribution of viruses infecting Iranian vineyards. Journal of Phytopathology, 153(1): 480-484.
- Uncini Manganelli, R.E., Zaccaro, L. and Tomei, P.E., 2005. Antiviral activity in vitro of Urtica dioica L., Parietaria diffusa M. et K. and Sambucus nigra L. Journal of Ethnopharmacology, 98(3): 323-327.
- Vivanco, J.M., Querci, M. and Salazar, L.F., 1999. Antiviral and antiviroid activity of MAP-containing extracts from Mirabilis jalapa roots. Plant Disease, 83(12): 1116-1121.
- Ziyyat, A., Legssyer, A., Mekhfi, H., Dassouli, A., Serhrouchni, M. and Benjelloun, W., 1997. Phytotherapy of hypertension and diabetes in oiental morocco. Journal of Ethnopharmacology, 58(1): 45-54.